DNA Marker I Plus：精細(xì)的DNA分子量標(biāo)準(zhǔn)DNA Marker I Plus 是一種即用型的DNA分子量標(biāo)準(zhǔn)，廣應(yīng)用于瓊脂糖凝膠電泳中，用于估算DNA片段的大小和進(jìn)行粗略定量。它由7條線狀雙鏈DNA條帶組成，覆蓋100 bp至700 bp的范圍，特別適合用于小片段DNA的分析。產(chǎn)品特點(diǎn)組成：包含100 bp、200 bp、300 bp、400 bp、500 bp、600 bp和700 bp的DNA條帶，其中400 bp條帶加亮顯示。即用型設(shè)計(jì)：已預(yù)混1×Loading Buffer，使用時(shí)無(wú)需額外添加，直接上樣。清晰的條帶：電泳圖像清晰，背景干凈，條帶亮度均勻。穩(wěn)定性高：在室溫下可穩(wěn)定保存三個(gè)月，長(zhǎng)期保存建議置于-20℃。注意事項(xiàng)保存條件：建議低溫保存，避免反復(fù)凍融，以防止核酸酶污染導(dǎo)致條帶降解。避免加熱：使用前無(wú)需加熱，直接上樣。電泳緩沖液：及時(shí)更換電泳緩沖液，使用高質(zhì)量的瓊脂糖，以獲得比較好分離效果。染料選擇：如果使用Goldview等染料，由于靈敏度較低，建議適當(dāng)增加Marker的上樣量。應(yīng)用場(chǎng)景DNA Marker I Plus 適用于常規(guī)PCR產(chǎn)物、基因組DNA片段等的大小鑒定，特別適合需要精確測(cè)定DNA片段大小的實(shí)驗(yàn)，如基因編輯驗(yàn)證、小片段插入/缺失分析等。畢赤酵母能夠執(zhí)行翻譯后修飾，如O-和N-糖基化以及二硫鍵形成，這對(duì)于許多蛋白的正確折疊有關(guān)。金黃色葡萄球菌基因組編輯

50×TAE是一種高濃度的緩沖液，主要成分包括Tris（三羥甲基氨基甲烷）、醋酸鈉和EDTA（乙二胺四乙酸）。它是一種常用的電泳緩沖液，廣應(yīng)用于瓊脂糖凝膠電泳中，用于分離和分析DNA片段。50×TAE的優(yōu)勢(shì)高效分離：TAE緩沖液在低濃度下具有較低的離子強(qiáng)度，適合分離大分子量的DNA片段。它能夠提供穩(wěn)定的pH環(huán)境，確保DNA在電泳過(guò)程中保持完整的結(jié)構(gòu)。兼容性強(qiáng)：50×TAE適用于多種類型的瓊脂糖凝膠電泳，無(wú)論是低濃度還是高濃度的凝膠，都能提供良好的分離效果。此外，它還兼容多種核酸染料，如EB、GoldView等。經(jīng)濟(jì)實(shí)用：50×TAE的高濃度設(shè)計(jì)（50倍濃縮）使其在使用時(shí)只需稀釋至工作濃度（1×TAE），減少了儲(chǔ)存空間和使用成本。使用方法使用50×TAE時(shí)，通常需要將其稀釋至1×工作濃度。具體操作如下：取適量50×TAE液體。按照1:49的比例加入去離子水，使其稀釋至1×TAE。配制好的1×TAE可用于制備瓊脂糖凝膠或作為電泳槽的緩沖液。在電泳過(guò)程中，1×TAE能夠提供穩(wěn)定的電流和電壓條件，確保DNA片段在凝膠中均勻遷移。此外，TAE緩沖液在電泳結(jié)束后也便于后續(xù)的DNA回收和純化操作。保存與注意事項(xiàng)50×TAE液體應(yīng)保存在室溫或4℃條件下，避免長(zhǎng)時(shí)間暴露在高溫或強(qiáng)光下。安徽九價(jià)HPV病毒樣顆粒表達(dá)服務(wù)技術(shù)服務(wù)50×TAE是一種高濃度的緩沖液，主要成分包括Tris（三羥甲基氨基甲烷）、醋酸鈉和EDTA（乙二胺四乙酸）。

50×TBE粉劑是一種高濃度的緩沖液原料，主要成分包括Tris（三羥甲基氨基甲烷）、硼酸和EDTA（乙二胺四乙酸）。它是一種廣用于瓊脂糖凝膠電泳的緩沖液，能夠?yàn)镈NA片段的分離和分析提供穩(wěn)定的環(huán)境。與液體形式相比，粉劑具有更高的穩(wěn)定性和更長(zhǎng)的保質(zhì)期，適合長(zhǎng)期儲(chǔ)存。50×TBE粉劑的優(yōu)勢(shì)高效分離：TBE緩沖液具有較高的離子強(qiáng)度，適合分離小分子量的DNA片段。它能夠在電泳過(guò)程中提供穩(wěn)定的電流，確保DNA片段的清晰分離，尤其在高分辨率電泳中表現(xiàn)出色。經(jīng)濟(jì)實(shí)用：粉劑形式的TBE在運(yùn)輸和儲(chǔ)存過(guò)程中更加方便，且成本較低。用戶可以根據(jù)實(shí)驗(yàn)需求自行配制不同體積的工作液，減少了浪費(fèi)，降低了實(shí)驗(yàn)成本。穩(wěn)定性高：50×TBE粉劑在干燥條件下非常穩(wěn)定，不易受環(huán)境因素影響。即使在實(shí)驗(yàn)室條件下長(zhǎng)期保存，也能保持良好的性能。兼容性強(qiáng)：50×TBE粉劑適用于多種類型的瓊脂糖凝膠電泳，無(wú)論是低濃度還是高濃度的凝膠，都能提供良好的分離效果。此外，它還兼容多種核酸染料，如EB、GoldView等。使用方法使用50×TBE粉劑時(shí)，需按照以下步驟配制緩沖液：根據(jù)實(shí)驗(yàn)需求，稱取適量的50×TBE粉劑。將粉劑溶解于適量的去離子水中，攪拌至完全溶解。定容至所需體積，得到50×TBE濃縮液。

在分子生物學(xué)研究中，RNA的分離與分析是基因表達(dá)研究的關(guān)鍵環(huán)節(jié)。然而，RNA的穩(wěn)定性較差，容易被RNase降解，因此在RNA電泳實(shí)驗(yàn)中，使用無(wú)RNase污染的緩沖液至關(guān)重要。BPTE電泳緩沖液(10×, RNase free)作為一種高效、穩(wěn)定的緩沖液，為RNA電泳提供了理想的條件。BPTE電泳緩沖液的主要成分包括PIPES、Tris和EDTA，這些成分共同作用，為RNA電泳提供了穩(wěn)定的pH環(huán)境和良好的導(dǎo)電性。該緩沖液經(jīng)過(guò)嚴(yán)格的RNase-free處理，確保在電泳過(guò)程中RNA不會(huì)被降解，從而保證實(shí)驗(yàn)結(jié)果的可靠性。優(yōu)勢(shì)與特點(diǎn)無(wú)RNase污染：BPTE電泳緩沖液(10×, RNase free)經(jīng)過(guò)0.1% DEPC處理，確保無(wú)RNase污染，適合RNA樣品的電泳分析。高效分離：該緩沖液能夠提供穩(wěn)定的電泳條件，確保RNA條帶清晰、分辨率高，尤其適用于小片段RNA的分離。高濃度設(shè)計(jì)：10×的高濃度設(shè)計(jì)使得BPTE緩沖液在使用時(shí)可以根據(jù)實(shí)驗(yàn)需求靈活稀釋，減少浪費(fèi)，降低實(shí)驗(yàn)成本。即用型配方：BPTE電泳緩沖液(10×, RNase free)為即用型溶液，無(wú)需額外配制，直接稀釋后即可使用，方便快捷。使用方法使用BPTE電泳緩沖液(10×, RNase free)時(shí)，需按照以下步驟操作：根據(jù)實(shí)驗(yàn)需求，將10×BPTE緩沖液稀釋至1×工作液。

TAFE凝膠電泳緩沖液(10×)：高效、穩(wěn)定的核酸電泳選擇TAFE凝膠電泳緩沖液(10×)是一種廣應(yīng)用于核酸電泳的高效緩沖液，主要由200 mM Tris-乙酸和5 mM EDTA組成。這種緩沖液以10倍濃縮的形式提供，使用時(shí)需用蒸餾水或去離子水稀釋至1×工作液。產(chǎn)品特點(diǎn)高效分離：TAFE緩沖液在核酸電泳中表現(xiàn)出色，尤其適用于分離小片段核酸，能夠提供清晰的電泳條帶。穩(wěn)定性高：10倍濃縮的設(shè)計(jì)使其在儲(chǔ)存和使用過(guò)程中更加穩(wěn)定，適合長(zhǎng)期保存。兼容性強(qiáng)：適用于瓊脂糖凝膠電泳，兼容常見(jiàn)的核酸染料（如EB或GoldView），滿足不同實(shí)驗(yàn)需求。使用便捷：使用前只需稀釋至1×工作液，操作簡(jiǎn)單。使用方法稀釋緩沖液：取適量的10×TAFE緩沖液，加入去離子水稀釋至1×工作液。例如，取10 mL的10×TAFE緩沖液，加入90 mL去離子水。制備凝膠：使用稀釋后的1×TAFE緩沖液制備瓊脂糖凝膠。電泳操作：將核酸樣品加入凝膠孔中，使用1×TAFE緩沖液進(jìn)行電泳。染色與觀察：電泳結(jié)束后，使用合適的核酸染料對(duì)凝膠進(jìn)行染色，并在紫外透射儀下觀察結(jié)果。保存與注意事項(xiàng)保存條件：TAFE凝膠電泳緩沖液(10×)應(yīng)保存在室溫下，避免長(zhǎng)時(shí)間暴露在高溫或強(qiáng)光下。使用期限：未開(kāi)封的產(chǎn)品有效期為12個(gè)月。為了實(shí)現(xiàn)目標(biāo)蛋白的產(chǎn)量，需要對(duì)畢赤酵母表達(dá)系統(tǒng)中的甲醇和山梨醇濃度、Mut形式、溫度等改變。人膠原蛋白

重組蛋白已被廣泛應(yīng)用于蛋白結(jié)構(gòu)研究、細(xì)胞功能試驗(yàn)、免疫檢測(cè)試劑、重組蛋白藥物開(kāi)發(fā)等眾多領(lǐng)域。金黃色葡萄球菌基因組編輯

在大腸桿菌中表達(dá)VLP（病毒樣顆粒）時(shí)，確保蛋白質(zhì)的純度和活性是至關(guān)重要的。以下是一些關(guān)鍵步驟和技術(shù)：1.選擇正確的表達(dá)載體：使用能夠高效表達(dá)目標(biāo)蛋白的質(zhì)粒載體，并確保含有適當(dāng)?shù)膯?dòng)子和標(biāo)簽（如His標(biāo)簽、GST標(biāo)簽等）以便于后續(xù)的純化和檢測(cè)。2.優(yōu)化培養(yǎng)條件：調(diào)整培養(yǎng)條件，如溫度、pH、誘導(dǎo)劑濃度和培養(yǎng)時(shí)間，以化蛋白的可溶性表達(dá)和活性。3.細(xì)胞裂解：使用溫和的裂解方法，如超聲波或酶裂解，以保持蛋白的活性并減少非特異性的蛋白質(zhì)降解。4.親和層析：利用融合標(biāo)簽（如His標(biāo)簽）進(jìn)行一步或多步親和層析，以高效地從細(xì)胞裂解物中純化目標(biāo)蛋白。5.離子交換層析：通過(guò)離子交換層析進(jìn)一步去除親和層析中未去除的雜質(zhì)，提高蛋白的純度。6.分子排阻層析（SEC）：使用SEC來(lái)確保產(chǎn)品是均一的蛋白質(zhì)，去除多聚體和大分子雜質(zhì)。7.活性檢測(cè)：通過(guò)生物化學(xué)或生物物理方法（如ELISA、WB、酶活性測(cè)定、圓二色譜CD等）來(lái)評(píng)估蛋白的活性和構(gòu)象。8.避免蛋白聚集：在表達(dá)和純化過(guò)程中，通過(guò)添加穩(wěn)定劑（如甘油、蔗糖）和使用低溫操作來(lái)防止蛋白聚集。金黃色葡萄球菌基因組編輯